Preparo de células competentes - Eletroporação
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#*O inóculo deve ser de 1% do volume final de meio | #*O inóculo deve ser de 1% do volume final de meio | ||
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Edição atual tal como 08h51min de 5 de setembro de 2011
IMPORTANTE
- A preparação deve ser feita com células frescas (com antibiótico -observar a resistência cromossomal da estirpe utilizada), em meio sólido LB ou 2xYT)
- TOP10F’ tem resistência cromossomal a estreptomicina (30 µg/mL)
Trabalhar em fluxo laminar estéril – não utilizar bico de Bunsen
Tabela de conteúdo |
[editar] Preparo das células
- Inocular uma colônia isolada em 10 mL de meio líquido 2xTY contendo o antibiótico adequado. Incubar a 250 rpm, 37 °C, O/N.
- Transferir 1,0 mL da cultura O/N para 100 mL de 2xTY + antibiótico, num erlenmeyer de 1000 mL. Incubar a 250 rpm, 37 °C, até OD600nm ~ 0,4 - 0,6 (não deixar passar de 0,600).
- O inóculo deve ser de 1% do volume final de meio
- Sempre utilizar 1% do volume de meio no erlenmeyer
- Deixar erlenmeyer no gelo por 30 min
- Centrifugar a 15.000 g, 15 min, 4 °C, em tubos estéreis gelados. Descartar o sobrenadante. Manter pellet no gelo
- Lavar o pellet com 100 mL de glicerol 10% gelado
- Ressuspender as células através de pancadas ritmadas aplicadas sobre o pellet com a palma da mão
- IMPORTANTE: executar esse passo alternando os frascos, procurando mantê-los fora do gelo pelo menor tempo possível. Observar a ressuspensão completa (ausência de grumos)
- Imediatamente após a ressuspensão, centrifugar como no passo 4
- Repetir a lavagem com a metade do volume (a ressuspensão é mais fácil)
- Transferir todo o volume para um único frasco (despejar) e centrifugar como no passo 4
- Ressuspender o pellet resultante gentilmente, com auxílio de pepitador regulável em GYT gelado
- O volume de ressuspensão dependerá do tamanho do pellet obtido. Sugestão: 300 – 500 µL
- Transferir a ressuspensão para eppendorfs estéreis mantidos no gelo
- Transferir alíquotas de 50 µL para eppendorfs estéreis gelados e imediatamente congelar em gelo seco (sem acetona). Jamais utilizar nitrogênio líquido
- Armazenar a –80 °C
[editar] Eletroporação
[editar] Preparação
- DNA
- Mantido no gelo até o momento de usar
- CUBETAS
- Devem ser previamente geladas (mantidas no freezer) e mantidas mergulhadas no gelo até o uso
- SUPORTE DE CUBETA
- Mantido em gelo
- Meio SOC
- Pré-aquecer a 37 °C
- Para cubetas de 2 µm
- 40 - 50 µL de célula competente
- volume desejado de DNA (2,0 a 10 μL)
- Condições de eletroporação
- Eletroporador: Eppendorf – Eletroporator Modelo 2510
- 2500 V
[editar] Procedimento
- Após eletroporação, adicionar rapidamente à cubeta de eletroporação 1,0 mL do meio SOC previamente aquecido a 37 °C.
- Pipetar gentilmente de 3 – 4x, com pipetador de 1 mL para ressuspensão e transferir para tubo tipo Falcon de 15 mL estéril
- Deixar sob agitação em Shaker (100 rpm, 37 °C, 30-40 min)
- Plaquear em placas de Petri contendo o meio e o antibiótico adequados
- 50 – 100 µL para placas de 9 cm de diâmetro, com auxílio de alça
- 500 µL para placas de 20 x 20 cm, com auxílio de esferas de vidro estéreis
[editar] Soluções
- MEIO 2xYT
- Triptona 1,6%
- Extaro de levedura 1,0%
- NaCl 0,5%
- Autoclavar 121 °C, 15 min
- GYT
- Glicerol 10%
- Extrato de levedura 0,125%
- Triptona 0,25%
- Autoclavar 121 °C, 15 min
- MEIO SOC
- Meio SOB – para 1 mL
- Glicose 20% - 40 µL (esterilizada por filtração)
- Cloreto de magnésio estéril 1 M – 40 µL
- MEIO SOB
- Triptona – 2%
- Extrato de levedura 0,5%
- Cloreto de sódio 0,058%
- Cloreto de potássio 0,02%
- Ajustar pH 7,5 com KOH 5N
- Autoclavar