Preparo de células competentes - Eletroporação

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*A preparação deve ser feita com células frescas (com antibiótico -observar a resistência cromossomal da estirpe utilizada), em meio sólido LB ou 2xTY)
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*A preparação deve ser feita com células frescas (com antibiótico -observar a resistência cromossomal da estirpe utilizada), em meio sólido LB ou [[#meio1|2xYT]])
 
*TOP10F’ tem resistência cromossomal a estreptomicina (30 µg/mL)
 
*TOP10F’ tem resistência cromossomal a estreptomicina (30 µg/mL)
  
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==Preparo das células==
 
==Preparo das células==
  
#Inocular uma colônia isolada em 10 mL de meio líquido 2xTY contendo o antibiótico adequado. Incubar a 250 rpm, 37 °C, O/N.
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#Inocular uma colônia isolada em 10 mL de meio líquido [[#meio1|2xTY]] contendo o antibiótico adequado. Incubar a 250 rpm, 37 °C, O/N.
#Transferir 1,0 mL da cultura O/N para 100 mL de 2xTY + antibiótico, num erlenmeyer de 1000 mL. Incubar a 250 rpm, 37 °C, até OD600nm ~ 0,4 - 0,6 '''(não deixar passar de 0,600)'''.
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#Transferir 1,0 mL da cultura O/N para 100 mL de [[#meio1|2xTY]] + antibiótico, num erlenmeyer de 1000 mL. Incubar a 250 rpm, 37 °C, até OD600nm ~ 0,4 - 0,6 '''(não deixar passar de 0,600)'''.
 
#*O inóculo deve ser de 1% do volume final de meio
 
#*O inóculo deve ser de 1% do volume final de meio
 
#*Sempre utilizar 1% do volume de meio no erlenmeyer
 
#*Sempre utilizar 1% do volume de meio no erlenmeyer
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#*Repetir a lavagem com a metade do volume (a ressuspensão é mais fácil)
 
#*Repetir a lavagem com a metade do volume (a ressuspensão é mais fácil)
 
#*Transferir todo o volume para um único frasco (despejar) e centrifugar como no passo 4
 
#*Transferir todo o volume para um único frasco (despejar) e centrifugar como no passo 4
#Ressuspender o pellet resultante gentilmente, com auxílio de pepitador regulável em GYT gelado  
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#Ressuspender o pellet resultante gentilmente, com auxílio de pepitador regulável em [[#GYT|GYT]] gelado  
 
#*O volume de ressuspensão dependerá do tamanho do pellet obtido. Sugestão: 300 – 500 µL
 
#*O volume de ressuspensão dependerá do tamanho do pellet obtido. Sugestão: 300 – 500 µL
 
#Transferir a ressuspensão para eppendorfs estéreis mantidos no gelo
 
#Transferir a ressuspensão para eppendorfs estéreis mantidos no gelo
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===Soluções===
 
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:Autoclavar 121 °C, 15 min
 
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:Glicerol 10%  
 
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:Extrato de levedura 0,125%
 
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:Glicose 20% - 40 µL (esterilizada por filtração)
 
:Glicose 20% - 40 µL (esterilizada por filtração)
 
:Cloreto de magnésio estéril 1 M – 40 µL
 
:Cloreto de magnésio estéril 1 M – 40 µL
  
;MEIO SOB
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:Triptona – 2%
 
:Triptona – 2%
 
:Extrato de levedura 0,5%
 
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Edição atual tal como 08h51min de 5 de setembro de 2011

IMPORTANTE

  • A preparação deve ser feita com células frescas (com antibiótico -observar a resistência cromossomal da estirpe utilizada), em meio sólido LB ou 2xYT)
  • TOP10F’ tem resistência cromossomal a estreptomicina (30 µg/mL)

Trabalhar em fluxo laminar estéril – não utilizar bico de Bunsen

Tabela de conteúdo

[editar] Preparo das células

  1. Inocular uma colônia isolada em 10 mL de meio líquido 2xTY contendo o antibiótico adequado. Incubar a 250 rpm, 37 °C, O/N.
  2. Transferir 1,0 mL da cultura O/N para 100 mL de 2xTY + antibiótico, num erlenmeyer de 1000 mL. Incubar a 250 rpm, 37 °C, até OD600nm ~ 0,4 - 0,6 (não deixar passar de 0,600).
    • O inóculo deve ser de 1% do volume final de meio
    • Sempre utilizar 1% do volume de meio no erlenmeyer
  3. Deixar erlenmeyer no gelo por 30 min
  4. Centrifugar a 15.000 g, 15 min, 4 °C, em tubos estéreis gelados. Descartar o sobrenadante. Manter pellet no gelo
  5. Lavar o pellet com 100 mL de glicerol 10% gelado
    • Ressuspender as células através de pancadas ritmadas aplicadas sobre o pellet com a palma da mão
    • IMPORTANTE: executar esse passo alternando os frascos, procurando mantê-los fora do gelo pelo menor tempo possível. Observar a ressuspensão completa (ausência de grumos)
    • Imediatamente após a ressuspensão, centrifugar como no passo 4
    • Repetir a lavagem com a metade do volume (a ressuspensão é mais fácil)
    • Transferir todo o volume para um único frasco (despejar) e centrifugar como no passo 4
  6. Ressuspender o pellet resultante gentilmente, com auxílio de pepitador regulável em GYT gelado
    • O volume de ressuspensão dependerá do tamanho do pellet obtido. Sugestão: 300 – 500 µL
  7. Transferir a ressuspensão para eppendorfs estéreis mantidos no gelo
  8. Transferir alíquotas de 50 µL para eppendorfs estéreis gelados e imediatamente congelar em gelo seco (sem acetona). Jamais utilizar nitrogênio líquido
  9. Armazenar a –80 °C

[editar] Eletroporação

[editar] Preparação

DNA
Mantido no gelo até o momento de usar
CUBETAS
Devem ser previamente geladas (mantidas no freezer) e mantidas mergulhadas no gelo até o uso
SUPORTE DE CUBETA
Mantido em gelo
Meio SOC
Pré-aquecer a 37 °C
Para cubetas de 2 µm
40 - 50 µL de célula competente
volume desejado de DNA (2,0 a 10 μL)
Condições de eletroporação
Eletroporador: Eppendorf – Eletroporator Modelo 2510
2500 V

[editar] Procedimento

  1. Após eletroporação, adicionar rapidamente à cubeta de eletroporação 1,0 mL do meio SOC previamente aquecido a 37 °C.
  2. Pipetar gentilmente de 3 – 4x, com pipetador de 1 mL para ressuspensão e transferir para tubo tipo Falcon de 15 mL estéril
  3. Deixar sob agitação em Shaker (100 rpm, 37 °C, 30-40 min)
  4. Plaquear em placas de Petri contendo o meio e o antibiótico adequados
    • 50 – 100 µL para placas de 9 cm de diâmetro, com auxílio de alça
    • 500 µL para placas de 20 x 20 cm, com auxílio de esferas de vidro estéreis

[editar] Soluções

MEIO 2xYT
Triptona 1,6%
Extaro de levedura 1,0%
NaCl 0,5%
Autoclavar 121 °C, 15 min
GYT
Glicerol 10%
Extrato de levedura 0,125%
Triptona 0,25%
Autoclavar 121 °C, 15 min
MEIO SOC
Meio SOB – para 1 mL
Glicose 20% - 40 µL (esterilizada por filtração)
Cloreto de magnésio estéril 1 M – 40 µL
MEIO SOB
Triptona – 2%
Extrato de levedura 0,5%
Cloreto de sódio 0,058%
Cloreto de potássio 0,02%
Ajustar pH 7,5 com KOH 5N
Autoclavar
Ferramentas pessoais
Espaços nominais
Variantes
Ações
Navegação
Ferramentas